Биореактивы

Условия хранения: Хранить при -20°C Последовательность: d(N)9 Примечание: Поставляются в сухом виде.

Условия хранения: Хранить при -20°C Последовательность: CACAATTCCACACAAC Примечание: Поставляются в сухом виде.

Антитела кролика к иммуноглобулинам мыши: биотин идеально подходят для использования в методах иммуноферментного анализа. В ИФА имеют следующую специфичность: Иммуноглобулины мыши 100 % Иммуноглобулины человека <5 %.

Тест-система «АртТест ГМО pat/esps/bar» предназначена для выявления фрагментов ДНК, широко встречающихся у генетически модифицированных линий растений.

DusQ 3 NHS активированный эфир представляет собой производное тушителя флуоресценции DusQ 3 для конъюгации с аминогруппами белков, олигонуклеотидов. Демонстрирует наиболее эффективное ковалентное связывание в диапазоне значений pH 7-9. DusQ 3 используется в качестве акцептора для флуорогенных зондов с двойной меткой, зондов для количественной ПЦР, секвенирования и других областей применения комбинации репортер-гаситель. Для DusQ 3 характерным является диапазон поглощения 620-730 нм, благодаря чему в методах, основанных на резонансном переносе флуоресцентной энергии (FRET), он служит акцептором в сочетании с флуорофорами с эмиссией в диапазоне от дальнего красного до ближнего-ИК таких, как Cyanine5, Cyanine5.5, AF 647.

Сайт узнавания и позиция гидролиза: CTGAAG(N)16 CTGAAG(N)16↑ GACTTC(N)14 GACTTC(N)14↓ Источник: Из штамма E.coli несущего клонированный ген Acu I из Acinetobacter calcoaceticus SRW4 Определение единицы активности: За единицу активности принимается количество фермента, необходимое для гидролиза 1 мкг ДНК фага лямбда за 1 час при 37°С в 50 мкл реакционной смеси. Субстрат для определения активности: ДНК фага лямбда Оптимальный буфер: SE-буфер Y + SAM Активность фермента в различных буферах в процентах от максимальной: B G O W Y ROSE 25 50 50 75 100 50 Условия хранения: 10 mM Tris-HCl (pH 7.5); 100 mM NaCl; 0.1 mM EDTA; 1 mM DTT; 200 μg/ml BSA; 50% глицерин; Хранить при -20°С. Лигирование: После гидролиза 2-кратным избытком фермента около 80% фрагментов ДНК сшиваются ДНК-лигазой и 80% из них могут быть повторно расщеплены Неспецифический гидролиз: Картина специфического гидролиза не изменяется при обработке 1 мкг ДНК 1 ед фермента в течение 16 часов при 37°С Чувствительность к метилированию: не проверялось С ферментом поставляется: 10 Х SE-буфер Y, BSA, SAM Примечание: Большой избыток фермента приводит к появлению звездчатой активности. Для достижения 100% активности BSA следует добавлять в реакционную смесь до концентрации 100 мкг/мл и SAM до концентрации 10мкМ. Допустимо использовать SAM в конечной концентрации 10-64 мкМ, т.е. 32 мМ штоковый раствор необходимо разбавлять в 3200-500 раз. Если объем реакционной смеси минимальный, например 10-20 мкл, то штоковый раствор SAM можно предварительно разбавить 5 мМ раствором H2SO4 или водой, хранить при -20°C. При длительной инкубации BSA использовать не рекомендуется. BSA при длительной инкубации использовать не рекомендуется.

Сайт узнавания и позиция гидролиза: GATNNNNATC GATNN↑NNATC CTANNNNTAG CTANN↓NNTAG Источник: Bacillus species 8 Определение единицы активности: За единицу активности принимается количество фермента, необходимое для гидролиза 1 мкг ДНК фага лямбда за 1 час при 60°С в 50 мкл реакционной смеси. Субстрат для определения активности: ДНК фага лямбда Оптимальный буфер: SE-буфер G Активность фермента в различных буферах в процентах от максимальной: B G O W Y ROSE 25 100 75 75 50 100 Условия хранения: 10 mM Tris-HCl (pH 7.5); 100 mM NaCl; 0.1 mM EDTA; 7 mM 2-меркаптоэтанол; 100 ug/ml BSA; 50% глицерин. Хранить при -20°С. Лигирование: После гидролиза 5-кратным избытком фермента около 80% фрагментов ДНК сшиваются ДНК-лигазой и могут быть повторно расщеплены. Неспецифический гидролиз: Картина специфического гидролиза не изменяется при обработке 1 мкг ДНК 5 ед фермента в течение 16 часов при 60°С. Чувствительность к метилированию: Блокируется Dam-метилированием при перекрывании (GmATC): 5’-GmATCN^NNATC-3’/3’-CTmAGN^NNTAG-5’. Блокируется (5mC)-метилированием при перекрывании: 5’-GATNN^NNAT(5mC)-3’/3’-(5mC)TANN^NNTAG-5’. Гидролизует полуметилированный сайт: 5’-GATNN^NNAT(5mC)-3’/3’-CTANN^NNTAG. С ферментом поставляется: 10 Х SE-буфер G Примечание: При более чем 5-кратном избытке фермента на 1 мкг ДНК наблюдается звездчатая активность.

В состав набора входят смеси олигонуклеотидных адаптерных праймеров, позволяющие выполнить быструю амплификацию 5’- и 3’-концевых фрагментов целевых транскриптов (Rapide Amplification of cDNA Ends – RACE) с кДНК-матрицы, приготовленной с помощью набора для синтеза кДНК Mint и обогащенной полноразмерными последовательностями. Для выявления 5’- и 3’-концевых последовательностей используется технология Step-Out RACE. В настоящий момент этот метод является самым быстрым и надежным способом получить данные о структуре полноразмерного транскрипта, основываясь на минимальной информации о его последовательности (30-50 нуклеотидов). Технология Step-Out RACE не включает технологически сложного процесса лигирования адаптеров и заменяет трудоемкую процедуру клонирования и скрининга полноразмерной библиотеки кДНК. В набор входят геноспецифические праймеры, позволяющие выполнить контрольную амплификацию 5’- и 3’-концевых фрагментов кДНК гена G3PDH мыши на контрольной матрице.

VdU (5-винил-2’-дезоксиуридин) — синтетический аналог тимидина, который можно использовать для изучения синтеза ДНК de novo и клеточной пролиферации. VdU может служить потенциальной заменой другим тимидиновым аналогам — BrdU (5-бром-2’-дезоксиуридину) и EdU (5-этинил-2’-дезоксиуридину). VdU способен встраиваться в реплицирующуюся ДНК вместо природного тимидина во время S-фазы клеточного цикла. Полученную таким образом винилсодержащую ДНК можно детектировать тетразинами, конъюгированными с биотином или флуоресцентными красителями, с помощью безмедной алкен-тетразиновой реакции (также известной как лигирование Дильса-Альдера, или IEDDA), и использовать в дальнейшем для пурификации ДНК или визуализации клеток методами микроскопии или цитометрии.

Спецификация Наименование показателя Норма Чистота (ГХ): ≥ 99,990 % Содержание воды по Фишеру, ppm ≤ 100 Кислотность: ≤ 0,00020 мэкв/г Щелочность: ≤ 0,00010 мэкв/г Ацетон, ppm ≤ 10,00 В кювете 1 см: оптическая плотность (% пропускания) Пропускание (при 205 нм): ≤ 1,000 (≥ 10,0 %) Пропускание (при 210 нм): ≤ 0,523 (≥ 30,0 %) Пропускание (при 220 нм): ≤ 0,222 (≥ 60,0 %) Пропускание (при 230 нм): ≤ 0,097 (≥ 80,0 %) Пропускание (при 250 нм): ≤ 0,022 (≥ 95,0 %) Пропускание (от 260 нм): ≤ 0,009 (≥ 98,0 %).

(E/Z)-4-Гидрокситамоксифен (4-OHT, цис/транс-4-гидрокситамоксифен, афимоксифен) — селективный модулятор эстрогеновых рецепторов (ER), активный метаболит тамоксифена. 4-Гидрокситамоксифен широко используется в исследованиях в качестве инструмента для индуцируемых манипуляций с геномом. 4-Гидрокситамоксифен используется в индуцируемой системе Cre-LoxP для контроля активности рекомбиназ CreER/CreERT2 и запуска тканеспецифической экспрессии генов или геномных/генетических модификаций (например, делеции генов). 4-Гидрокситамоксифен входит в состав систем TRAP/TRAP2, обеспечивающих генетический доступ к активности нейронов. Он также используется при редактировании генов CRISPR/Cas9 для активации инактивированной нуклеазы Cas9. Кроме того, 4-гидрокситамоксифен является внутримембранным ингибитором перекисного окисления липидов, способствующим удалению пероксильных радикалов.

Сайт узнавания и позиция гидролиза: GTTAAC GTT↑AAC CAATTG CAA↓TTG Источник: Из штамма E.coli несущего клонированный ген Hpa I из Haemophilus parainfluenzae Определение единицы активности: За единицу активности принимается количество фермента, необходимое для гидролиза 1 мкг ДНК фага лямбда за 1 час при 37°С в 50 мкл реакционной смеси. Субстрат для определения активности: ДНК фага лямбда Оптимальный буфер: SE-буфер Y Активность фермента в различных буферах в процентах от максимальной: B G O W Y ROSE 50 10 25 100 25 Условия хранения: 10 mM Tris-HCl (pH 7.5); 50 mM NaCl; 0.1 mM EDTA; 1 mM DTT; 200 μg/ml BSA; 50% глицерин. Хранить при -20°С. Лигирование: После гидролиза 5-кратным избытком фермента около 60% фрагментов ДНК сшиваются ДНК-лигазой и могут быть повторно расщеплены. Неспецифический гидролиз: Картина специфического гидролиза не изменяется при обработке 1 мкг ДНК 5 ед фермента в течение 16 часов при 37°С. Чувствительность к метилированию: не проверялось С ферментом поставляется: 10 Х SE-буфер Y. Для фасовок Turbo (E077T и E078T) прикладывается буфер Y. Примечание: Большой избыток фермента приводит к появлению звездчатой активности.