Поиск

Данный носитель предназначен для автоматизированного синтеза олигонуклеотидов с 3’-терминальной модификацией тушителем DusQ 2. Размер пор носителя 500 Å рекомендуется для синтеза олигонуклеотидов длиной до 50 оснований. DusQ 2 — тушитель флуоресценции с поглощением в диапазоне 560–670 нм. Подходит для эффективного тушения по механизму FRET флуорофоров с эмиссией в указанном диапазоне. Кроме этого, тушитель используется в гибридизационных зондах на основе статического и смешанного тушения, при этом эффективность тушения в незначительной степени зависит от перекрытия спектров флуорофора и тушителя, что обеспечивает эффективное тушение широкого спектра флуорофоров, в том числе с эмиссией в красном и дальнем красном диапазонах. Таким образом, список флуорофоров для использования с DusQ 2 включает, но не ограничивается Cyanine3, TAMRA, ROX, Cyanine3.5, Quasar® 570, Pulsar® 650, Cyanine5, Quasar® 670, Cyanine5.5, Quasar® 705.

BDP FL L-цистин представляет собой симметричный дисульфид для обратимого тиол-специфического мечения тиолированных олигонуклеотидов, белков и клеток. BDP FL L-цистин состоит из двух молекул BDP FL, соединенных между собой посредством дисульфидного мостика между двумя цистеиновыми остатками. В состоянии димерного дисульфида происходит тушение флуоресценции красителя. Дисульфидный мостик между молекулами BDP FL L-цистина очень стабилен и защищает спонтанное высвобождение тушения флуоресценции. Как и другие симметричные дисульфиды, BDP FL L-цистин вступает в реакции тиол-дисульфидного обмена. Восстановление дисульфидного мостика высвобождает мономерную молекулу красителя и приводит к возникновению флуоресценции в зеленой области спектра.

Cyanine3 - активированный эфир для двумерного электрофореза, аналог Cy3® minimal dye системы Ettan DIGE® для разностного гель-электрофореза белков в протеомике. Реагент поставляется в сухом виде в упаковках, содержащих специальным образом отмеренное количество красителя. Различие в количестве активированного эфира между фасовками составляет не более 10%. Перед использованием необходимо растворить краситель в диметилформамиде.

RAPID DiI (также известный как FAST DiI™) — карбоцианиновый краситель, флуоресцирующий в оранжево-красной части спектра, ненасыщенный аналог DiI (DiIC18(3)). RAPID DiI — липофильный краситель, который маркирует клеточные мембраны за счет встраивания двух длинных углеводородных цепей (углерод C18) в липидный бислой. Краситель слабо флуоресцирует до включения в мембраны. RAPID DiI диффундирует латерально в плазматической мембране, постепенно окрашивая всю клетку, что позволяет использовать его в качестве антероградного и ретроградного трейсера нейронов. В интактной ткани краситель не переходит из меченых клеток в немеченые, однако такой перенос может происходить при разрушении мембран клеток, например, после секционирования образца. RAPID DiI мигрирует в мембранах примерно на 50% быстрее, чем DiI. RAPID DiI можно использовать совместно с другими трейсерами в двухцветных окрашиваниях, например, с DiA и DiO. RAPID DiI представлен в виде кристаллов, которые можно наносить непосредственно на мембраны.

Производные полиэтиленгликоля с небольшим количеством звеньев (в данном случае 3 мономерных звена) являются отличными линкерами для конъюгации биомолекул, позволяя проводить реакцию в водных условиях и повышая гидрофильность полученного в результате конъюгации соединения. Терминальные алкины легко вступают в клик-реакции с различными азидами в присутствии солей меди (I), а производные малеимида реагируют с тиолами. Это особенно актуально в случае белков и пептидов, которые содержат свободные -SH группы. Алкин-ПЭГ3-малеимид представляет собой кросс-линкер с довольно широкими возможностями использования в химии, биологии и смежных областях.

BDP R6G — бордипиррометеновый краситель с длинами волн поглощения и эмиссии, соответствующими красителю родамину 6G (R6G). BDP R6G — яркий и фотостабильный флуорофор. Тетразиновый фрагмент позволяет вовлекать этот реагент в реакцию Дильса-Альдера с обращенными электронными требованиями с напряженными олефинами — транс-циклооктенами, азетинами, и другими напряженными олефинами. Эта реакция не требует использования катализаторов и протекает быстро, в том числе в водной среде.

DAF-FM диацетат (DAF-FM DA) — проникающий в клетки флуоресцентный индикатор для детекции и количественного определения низких концентраций оксида азота (NO). DAF-FM DA пассивно диффундирует через клеточные мембраны. Попав внутрь клеток, он деацетилируется внутриклеточными эстеразами и превращается в непроникающую сквозь мембраны форму — DAF-FM. Квантовый выход флуоресценции DAF-FM составляет ~ 0,005, однако он увеличивается примерно в 160 раз до ~ 0,81 после реакции с NO с образованием флуоресцентного бензотриазола (максимумы возбуждения / испускания 495/515 нм). DAF-FM более чувствителен для обнаружения NO (предел обнаружения ~3 нМ), чем DAF-2 (~5 нМ). Флуоресценция NO-аддукта DAF-FM не зависит от pH выше pH 5,5. Также NO-аддукт DAF-FM обладает большей фотостабильностью по сравнению с DAF-2 и обеспечивает более надежные результаты и дополнительное время для визуализации. Перед приготовлением рабочего раствора DAF-FM DA следует предварительно растворить в ДМСО. Буферы, содержащие бычий сывороточный альбумин (БСА) или феноловый красный, могут влиять на флуоресценцию, поэтому их следует использовать с осторожностью.

G-квадруплексы (G4s) представляют собой вторичные структуры, образующиеся в ДНК и РНК за счет неканонических водородных связей между четырьмя гуаниновыми основаниями [1,2]. В ядре ДНК G4s связаны с эпигенетической регуляцией экспрессии генов посредством их взаимодействия с регуляторными белками, такими как транскрипционные факторы и модификаторы хроматина [3,4]. РНК G4s связаны со сплайсингом, транспортом и регуляцией трансляции РНК, а также с РНК-опосредованными стрессовыми реакциями в цитоплазме клетки [5-7]. TOR-G4 — производное тиазолового оранжевого, недавно синтезированный флуоресцентный индикатор G4s [8]. TOR-G4 является низкомолекулярной альтернативой иммунохимии со специфичными к G4 антителами. TOR-G4 позволяет визуализировать G4s на основе изменений продолжительности флуоресценции индикатора при связывании им нуклеиновой кислоты. Продолжительность флуоресценции TOR-G4 самая высокая в присутствии G4s и значительно ниже с другими последовательностями. Внутри клеток TOR-G4 преимущественно колокализуется с РНК в цитоплазме и ядрышках, что делает его первым прижизненным зондом, валидированным для изучения роли РНК G4s в функционировании клеток. TOR-G4 подходит для визуализации РНК G4s с помощью FLIM [8].

Краситель QuDye для определения количества белка предназначен для определения концентрации белка на флуориметре в диапазоне исходной концентрации белка 12,5–5000 мкг/мл. Краситель может быть использован для определения концентрации белка как на планшетном ридере, так и кюветном флуориметре, при этом диапазон измерения может быть шире и зависит от характеристик используемого прибора. Краситель селективно связывается с мицеллами SDS-белок, поэтому нуклеотиды, ДНК, РНК, аминокислоты, соли, восстанавливающие агенты (2-меркаптоэтанол, ДТТ) и другие примеси (кроме детергентов), присутствующие в пробе, не оказывают влияния на результаты измерений. Краситель QuDye для определения количества белка достаточно универсален и позволяет измерять концентрацию различных белков с высокой чувствительностью. Данный продукт входит в состав готового Набора для определения количества белка на флуориметре, а также востребован как OEM-компонент для наборов других производителей.

5X Quick ligation buffer предназначен для быстрого лигирования (5–15 минут при комнатной температуре). Буферы оптимизированы для использования с Quick-TA и T4 ДНК лигазами. В состав обоих буферов входят АТФ и ДТТ, которые плохо сохраняются в водных растворах, поэтому буфер не следует оставлять при комнатной температуре после окончания работы.

BDP TR - бордипиррометеновый краситель (BODIPY®) для канала ROX. Это соединение содержит гидразидную группу для конъюгации с альдегидами и кетонами.

Транс-циклооктен (ТЦО, TCO) амидит применяется для введения фрагмента ТСО в субстраты, содержащие первичную или вторичную гидроксильные группы, в особенноcти используется для получения ТСО-модифицированных олигонуклеотидов. Транс-циклооктен легко реагирует с тетразинами по реакции Дильса-Альдера (inverse electron-demand Diels-Alder cycloaddition, IEDDA). Тетразин-транс-циклооктеновое лигирование обладает сверхбыстрой кинетикой, селективностью и длительной устойчивостью в водных средах, что важно для применений с участием низкоконцентрированных систем, например таких как белок-белковые конъюгаты и т. д.